Цитологическое исследование с окраской по лейшману — АНТИ-РАК

Цитологическое исследование с заключением по терминологической системе Бетесда (с описанием цитограммы), 1 стекло, окраска по Лейшману

У женщин репродуктивного возраста рекомендуется забирать мазки не ранее, чем на 5-й день менструального цикла и не позднее, чем за 5 дней до предполагаемого начала менструации.

Мазки не следует брать:

    ранее 48 часов после полового контакта; во время менструации; ранее 48 часов после использования свечей и других веществ, содержащих жир, раствора уксуса или Люголя, тампонов или спермицидов; после вагинального исследования (УЗИ малого таза, кольпоскопия), спринцевания; в период лечения урогенитальных инфекций

Цитологическое исследование мазков, взятых из шейки матки, является основой программ, направленных на раннее выявление предраковых состояний и рака шейки матки.

Исследование цитологических препаратов, полученных из цервикального канала и влагалищной части шейки матки включает оценку качества полученного материала, определение наличия и характера поражения шейки матки в соответствие с общепринятой системой оценки, в том числе системой Бетесда.

Рак шейки матки чаще всего развивается в зоне трансформации, ему предшествуют внутриэпителиальные поражения (дисплазии). В связи с тем, что дисплазии могут располагаться на небольших, ограниченных участках, очень важно, чтобы материал был получен со всей поверхности шейки, особенно с зоны трансформации.

Для окраски мазков используют различные методы. Метод Папаниколау является самым распространенным способом окраски мазков в мире. В России также используют окрашивание по Романовскому в модификации Лейшмана.

Дисплазия 1 - 2 степени в цервикалном канале по цитологии, после ...

Показания к назначению исследований:

    скрининговые исследования для выявления онкологической патологии шейки матки; мониторинг состояния шейки матки после терапии.

Результат цитологического исследования, проводимого в CMD, может носить только формализованный характер в соответствие с терминологической системой Бетесда 2014 г.

(с окраской по Лейшману без описания цитограммы — исследования 120015, 120016) или дополнительно может включать описательную часть (с окраской по Лейшману и по Папаниколау с описанием цитограммы — исследования 120001, 120002, 120003, 120004).

Терминологическая система Бетесда (Terminology Bethesda System, TBS) была разработана в 1988 г. в г. Бетесда (США, Maryland) в связи с появлением новых знаний о роли ВПЧ в генезе рака шейки матки и с целью более эффективной передачи информации от лабораторий клиницистам, повышения воспроизводимости результатов цитологической диагностики и обеспечения стандартизации лечения выявленных нарушений.

Терминологическая система Бетесда, 2014 основные терминологические характеристики и сокращения

//bono-esse. ru/blizzard/Lab/Citolog/mg 03.html

//getmedic. ru/raznoe/101888-tsitogramma-s-vozrastnymi-izmeneniyami-atroficheskij-tip-mazka-13

//www. cmd-online. ru/analizy-i-tseny/citologicheskoje-issledovanije-s-zakluchenijem-po-terminologicheskoj-sisteme-betesda 120001/

Российская медицинская академия последипломного образования

Материалом для цитологической диагностики может быть:

    пунктах молочной железы; отпечатки с биоптата; соскоб с ткани молочной железы (или опухоли), удаленной во время операции; выделения из соска (метод практически неэффективен для диагностики злокачественных новообразований молочной железы, за исключением внутрипротокового рака); материал, полученный с эрозивных поверхностей.

Для диагностического заключения по цитологическим препаратам важно получение полноценного материала: он должен быть взят не из окружающих тканей, а из очага поражения.

Стоматология Лечебно-диагностический центр «ГлавВрач» в Королеве ...

Трудности могут отмечаться при выраженном фиброзе или наличии кистозно измененных участков, в таких случаях нужно пытаться получить материал из разных участков опухоли, из стенок кисты;

При проведении диагностической пункции необходимо соблюдать ряд правил:

    Игла и шприц для пункции должны быть абсолютно сухими. Не следует проводить анестезию пунктируемого образования в связи с тем, что сама пункция обычно не более болезненна, чем прокол иглой для анестезии, кроме того, применение новокаина может вызвать изменение клеточных элементов. Мандреном, как правило, не пользуются, так как иглы, применяемые для диагностических пункций, имеют очень маленький диаметр и косой срез; игла легко продвигается через ткани, расположенные над пораженным участком (кожу, подкожную клетчатку, мышцы), расслаивая их, поэтому закупорка иглы происходит очень редко. Нельзя пунктировать опухоль при подозрении на меланому. Пункцию выполняют с соблюдением правил асептики и антисептики.

Техника выполнения пункции

Пункцию проводит лечащий врач или врач клинической лабораторной диагностики в процедурном кабинете, иногда — в больничной палате (в зависимости от тяжести состояния больного).

Если требуется контроль за положением иглы (опухоль небольших размеров, образование с кальцинатами и проч.), пункция выполняется под рентгенологическим контролем или под контролем ультразвукового исследования, компьютерной томографии и других методов в соответствующем кабинете.

Перед проведением пункции участок поражения тщательно пальпируют, определяют его подвижность, связь с окружающими тканями и возможность оптимальной фиксации. Опухоль фиксируют пальцами левой руки (если пунктирующий врач — правша).

Опухоль при пальпации кажется расположенной более поверхностно, чем на самом деле, поэтому угол направления иглы при аспирационной пункции не должен быть перпендикулярен к ребрам.

Это особенно важно соблюдать при маленькой молочной железе, в которой опухоль может находиться близко к грудной стенке, и игла может попасть в ребро.

Цитологическое исследование соскоба / мазка с шейки матки и ...

Если игла попадет в ребро, в мазках можно обнаружить элементы костно-мозгового кроветворения (мегакариоциты, бластные клетки, миелоциты, эритробласты и проч.).

Пункцию производят тонкой иглой (наружный диаметр 0,6-0,7 мм), которая присоединяется к шприцу 10-20 мл. Иглу без шприца (или с присоединенным шприцем с опущенным поршнем) вводят через кожу в исследуемое образование под небольшим углом к грудной стенке.

По достижении очага поражения осторожно пальпируют ткань вокруг введенной иглы, определяя правильность прокола; при небольшом подкожном узле можно несколько наклонить иглу, при этом опухоль на игле сместится, что ощущается пальцами и подтверждает правильное ее положение.

Не рекомендуется производить вращательные движения иглой, так как это наносит лишнюю травму, не приводя к получению более полноценного материала. После этого присоединяют шприц с опущенным поршнем (если он не был присоединен сразу) и делают два-три резких насасывающих движения, снимая шприц с иглы после каждого подъема поршня.

По окончании взятия шприц необходимо снять, иглу извлекать без шприца, что позволяет сохранить материал; для цитологического исследования обычно достаточно материала, попавшего в просвет иглы.

Содержимое иглы выдувается на предметное стекло (или в контейнер со специальным консервирующим раствором для жидкостной цитологии) при помощи шприца, который наполняется воздухом и вновь соединяется с иглой.

Если при проколе опухоли появляется жидкость, то под иглу подставляют пробирку и собирают жидкость. Если она не стекает, можно использовать шприц, осторожно оттягивая поршень и набирая жидкость в шприц, после чего шприц снимают и его содержимое сливают в пробирку.

После удаления всей жидкости и помещения ее в пробирку (с добавлением нескольких кристаллов цитрата натрия) обязательно следует тщательно пальпировать участок, из которого была удалена жидкость, для исключения остаточных масс, которые могли быть скрыты кистозным содержимым.

Если при пункции получена жидкость, вся она должна быть доставлена в лабораторию.

Цитологические препараты можно делать из материала, полученного при биопсии (столбика ткани):

    отпечатки выполняются путем аккуратного перемещения биоптата иглой по стеклу; при этом нужно стараться не травмировать биопсированный кусочек.

Разрез уплотнения, опухоли или лимфатического узла необходимо проводить сухим скальпелем, чтобы избежать разрушения клеток водой.

    Операционный материал получают, прикладывая стекло к разрезу удаленной опухоли или другого участка поражения. Если консистенция ткани плотная, что не позволяет сделать отпечатки, производят соскоб с поверхности свежего разреза опухоли (путем легкого соскабливания скальпелем или краем предметного стекла с последующим приготовлением препарата)

Отделяемое из молочной железы

Для приготовления препарата капля отделяемого из молочной железы наносится на стекло и готовится мазок.

Если отделяемого немного, для получения мазков необходимо сцеживающими движениями, надавливая большим и указательным пальцами в области околососковой зоны, получить капли выделений из соска.

Мазки-отпечатки с эрозированных поверхностей

К месту поражения прикладывается предметное стекло, на котором остается некоторое количество клеточных элементов и отделяемого.

Материал можно брать также с помощью ватного тампона и наносить на предметное стекло в виде отпечатков.

Маркировка, доставка и обработка материала в цитологической лаборатории

Цитологический материал доставляют в лабораторию в ближайшие сроки после его получения. Особенно это относится к содержимому кист и любому кровянистому материалу.

Для доставки необходимо иметь специальные контейнеры для предметных стекол, пробирки. Не допускается контакт нативного материала, в том числе подсушенного предметного стекла, с бланком-направлением.

Полученный материал доставляют в лабораторию с бланком-направлением, в котором должны быть представлены паспортные данные обследуемой пациентки, диагноз, проведенное лечение, точно должна быть указана локализация участка, откуда был взят материал, и способ его получения.

Получение материала

Рак шейки матки чаще всего развивается в зоне трансформации, ему предшествуют фоновые процессы и внутриэпителиальные поражения (дисплазия эпителия), которые могут располагаться на небольших участках, поэтому важно, чтобы материал был получен со всей поверхности шейки матки, особенно из зоны стыка плоского и цилиндрического эпителия.

Число измененных клеток в мазке бывает различным, и если их мало, то увеличивается вероятность, что патологические изменения могут быть пропущены при просмотре препарата. Для эффективного цитологического исследования необходимо учитывать:

    при профилактических осмотрах цитологические мазки следует брать у женщин независимо от жалоб, наличия или отсутствия изменений слизистой оболочки. Цитологическое исследование следует повторять не реже, чем раз в три года; желательно получать мазки не ранее, чем на 5-е сутки менструального цикла и не позднее, чем за 5 суток до предполагаемого начала менструации; нельзя брать материал в течение 48 ч после полового контакта, использования любрикантов, раствора уксуса или Люголя, тампонов или спермицидов, спринцевания, введения во влагалище медикаментов, свечей, кремов, в т. ч. кремов для выполнения ультразвукового исследования; беременность – не лучшее время для скрининга, так как возможны неправильные результаты, но, если нет уверенности, что женщина придет на обследование после родов, лучше мазки взять; при симптомах острой инфекции желательно получать мазки с целью обследования и выявления патологических изменений эпителия, этиологического агента; также необходим цитологический контроль после лечения, но не ранее, чем через 2 мес. после окончания курса.

Материал из шейки матки должен брать врач-гинеколог или (при скрининге, профилактическом осмотре) хорошо обученная медицинская сестра (акушерка).

Важно, чтобы в мазок попадал материал из зоны трансформации, так как около 90% опухолей исходит из зоны стыка плоского и цилиндрического эпителия и зоны трансформации и только 10% из цилиндрического эпителия цервикального канала.

С диагностической целью материал получают раздельно из эктоцервикса (влагалищной порции шейки матки) и эндоцервикса (цервикального канала) с помощью шпателя и специальной щетки (типа Cytobrush).

При проведении профилактического осмотра используют Cervex-Brush, различные модификации шпателя Эйра и другие приспособления для получения материала одновременно из влагалищной части шейки матки, зоны стыка (трансформации) и цервикального канала.

Перед получением материала шейку матки обнажают в “зеркалах”, дополнительных манипуляций не проводят (шейку не смазывают, слизь не удаляют; если слизи много – ее аккуратно снимают ватным тампоном, не надавливая на шейку матки.).

Щетку (шпатель Эйра) вводят в наружный зев шейки матки, осторожно направляя центральную часть приспособления по оси цервикального канала. Далее ее наконечник поворачивают на 360° (по часовой стрелке), достигая тем самым получения достаточного числа клеток из эктоцервикса и из зоны трансформации.

Приготовление препаратов

Перенос образца на предметное стекло (традиционный мазок) должен происходить быстро, без подсушивания и потери прилипших к инструменту слизи и клеток.

Если предполагается приготовление тонкослойного препарата с помощью метода жидкостной цитологии, головку щетки отсоединяют от ручки и помещают в контейнер со стабилизирующим раствором.

Фиксация мазков выполняется в зависимости от предполагаемого метода окрашивания.

Окрашивание по Папаниколау и гематоксилин-эозином наиболее информативны в оценке изменений эпителия шейки матки; любая модификация метода Романовского несколько уступает этим методам, однако при наличии опыта позволяет правильно оценить и характер патологических процессов в эпителии и микрофлору.

Клеточный состав мазков представлен слущенными клетками, находящимися на поверхности эпителиального пласта. При адекватном получении материала с поверхности слизистой оболочки шейки матки и из цервикального канала в мазок попадают клетки влагалищной порции шейки матки (многослойный плоский неороговевающий эпителий), зоны стыка или трансформации (цилиндрический и, при наличии плоскоклеточной метаплазии, метаплазированный эпителий) и клетки цервикального канала (цилиндрический эпителий).

Условно клетки многослойного плоского неороговевающего эпителия принято делить на четыре типа: поверхностные, промежуточные, парабазальные, базальные.

Чем лучше выражена способность эпителия к созреванию, тем более зрелые клетки попадают в мазок. При атрофических изменениях на поверхности эпителиального пласта расположены менее зрелые клетки.

Http://bono-esse. ru/blizzard/Lab/Citolog/mg 03.html

Http://inlife-med. ru/ishop/product/330

Понравилась статья? Поделиться с друзьями:
Медицинский взгляд на еду
Adblock
detector